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Triple R connection of geminivirus multiplication

Applicant Professor Dr. Holger Jeske (†)
Subject Area Organismic Interactions, Chemical Ecology and Microbiomes of Plant Systems
Term from 2011 to 2016
Project identifier Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) - Project number 206285263
 
Final Report Year 2016

Final Report Abstract

Geminiviren haben in zunehmendem Maße die Ernten von wichtigen Kulturpflanzen, wie Bohnen, Mais, Maniok, Tomaten und Zuckerrüben weltweit bedroht. Ihr epidemiologisches Potential ist durch eine hohe Mutations- und Rekombinationsrate begründet, wodurch sie sich schnell an neue Pflanzenarten und -sorten anpassen und Resistenzen überwinden können. Wegen ihrer kleinen Genome sind sie auf eine Vielzahl von pflanzlichen Proteinen angewiesen, um sich effektiv zu vermehren. Im Projekt sollten deswegen Wirtsgene identifiziert werden, die im Wechselspiel von Replikation, Rekombination und Reparatur (RRR) einen Einfluss auf die Virus-Vermehrung haben. Im Modellsystem aus Euphorbia Yellow Mosaic Virus und Arabidopsis thaliana wurden 23 T-DNA Insertionslinien mit ausgeschalteten Genen, die für RRR relevant sind, durch biolistische Inokulation geprüft. Der Infektionserfolg wurde mittels hochauflösender Gelelektrophorese und Hybridisierung sowie durch Hochdurchsatz-Sequenzierung ermittelt. Dabei erwiesen sich drei Gene als wichtig: RAD 51D als Vermittler des Single-Strand-Annealing für die Homologe Rekombination (HR) förderte die virale Replikation, KU 80 als Schlüsselenzym des Non-homologous Endjoining (NHEJ) verzögerte diese und die Wirkungen der Transläsionspolymerasen pol η und pol ζ können die hohen Mutationsraten erklären helfen. Diese neuen Erkenntnisse um das komplexe Zusammenspiel von Replikation, HR und NHEJ erweitern unser Bild von der genetischen Flexibilität von Geminiviren beträchtlich und sind unerlässlich für eine rationale Züchtung oder Herstellung von Resistenzen.

Publications

  • (2014). Somatic homologous recombination in plants is promoted by a geminivirus in a tissue-selective manner. Virology 452, 287-296
    Richter, K., Kleinow, T., and Jeske, H.
    (See online at https://doi.org/10.1016/j.virol.2014.01.024)
  • (2015). A population genetic perspective on geminivirus infection. J. Virol. 89, 11926-11934
    Weigel, K., Pohl, J., Wege, C., and Jeske, H.
    (See online at https://doi.org/10.1128/JVI.01956-15)
  • (2015). Early function of the Abutilon mosaic virus AC2 gene as a replication brake. J. Virol. 89, 3683-3699
    Krenz, B., Deuschle, K., Deigner, T., Unseld, S., Kepp, G., Wege, C., Kleinow, T., and Jeske, H.
    (See online at https://doi.org/10.1128/JVI.03491-14)
  • (2015). Form follows function in geminiviral minichromosome architecture. Virus Res. 196, 44–55
    Paprotka, T., Deuschle, K., Pilartz, M., and Jeske, H.
    (See online at https://doi.org/10.1016/j.virusres.2014.11.004)
  • (2015). Geminivirale Infektion in Interaktion mit DNA-Reparatur und - Schadenstoleranz. Dissertation. Universität Stuttgart
    Richter, K. S.
  • (2015). KU80, a key factor for non-homologous endjoining, retards geminivirus multiplication. J. Gen. Virol. 96(9), 2913-2918
    Richter, K. S., and Jeske, H.
    (See online at https://doi.org/10.1099/jgv.0.000224)
  • (2015). Rad54 is not essential for any geminiviral replication mode in planta. Plant Mol. Biol. 87, 193–202
    Richter, K. S., Ende, L., and Jeske, H.
    (See online at https://doi.org/10.1007/s11103-014-0270-1)
  • (2016). The contribution of translesion synthesis polymerases on geminiviral replication. Virology, 488, 137–148
    Richter, K. S., Götz, M., Winter, S., and Jeske, H.
    (See online at https://doi.org/10.1016/j.virol.2015.10.027)
 
 

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